Die mikrobielle Belastung des Gartens

Die Abstriche wurden mit maximalem Rückstandsverdünnungsmittel in ihre Behälter gefüllt und ebenfalls in das Col-Feld gegeben, um einen physiologischen Schock für die Organismen zu vermeiden (Williamson et al., 2003, American Public Health Association, 1998). Der Kühler wurde in das Microbiology Laboratory der University of Calibre transportiert. Eine mikrobiologische Analyse der frischen Gartenei-Proben wurde durchgeführt. Die mikrobielle Belastung und die Art des Garteneises wurden bestimmt. Mikrobenbelastung bei frisch geernteten Gartenbauproben Die Mikrobenbelastung des Gartens wurde von Downs und Ito (2001) und von Schelhorn (1980) bestimmt. 50 g Garteneis wurden gewogen und in einen sterilen Mixer gegeben. Dies wurde aseptisch gemischt und 25 Teile des Produkts wurden in einen sterilen Kolben in 225 ml Verdünnungsmittel eines sterilen Maximalgewinnungsverwertungsmittels (Pepton / Salzlösung) gegeben. Das Homogenat wurde 30 Minuten stehen gelassen und 2 bis 3 Minuten kräftig geschüttelt. (Mosupye und Von Holy, 1999). Aus dieser Verdünnung wurden weitere zehnfache Verdünnungen bis zu 10-4 hergestellt. Das Gießplattenverfahren wurde durch Pipettieren von je 1 ml der Verdünnungen 10-3 und 10-4 mit Pipette in leere sterile Petrischalen und Zugabe von 15 ml auf 450 ° C gekühltem Plattenzählagar (PCA) zu jeder Platte verwendet. (Downs und Ito, 2001). Die Platten wurden vorsichtig vortextiert, um den Inhalt richtig zu mischen (Geyid et al., 1991).

Diese wurden 18 bis 24 Stunden bei 370 ° C inkubiert. Am Ende der Inkubationszeit wurden diskrete Kolonien (30-300 KBE) gezählt und unter Verwendung des geeigneten Verdünnungsfaktors berechnet. Die Keimlast pro Gramm für die Gartenprobe wurde bestimmt. Die mikrobielle Flora des frisch geernteten Produktes ließ die Tupfer eine Stunde lang in ihren Jacken stehen und wurde dann auf Sabouranud Dextrose Agar (SDA), Salmonella Shield Agar (SSA), Mac Conkey Agar, MRS Agar und Manitol Salt Agar aufgetragen und inkubiert bei 370 ° C für 24 Stunden. Während die SDA-Platten 3 Tage bei 270 ° C inkubiert wurden, wurden die Platten nach den Inkubationszeiten auf Wachstum untersucht. Isolierung und Identifizierung Die Isolierung wurde in ein frisches, sauberes Medium subkultiert und 24 Stunden lang inkubiert. Die Isolationskolonien wurden kulturell untersucht und Stammkulturen wurden hergestellt. Für die Pilzisolate wurde eine Nasslagerung mit Lactophenol in Baumwollblau erzeugt. Die Bakterienisolate wurden mit Gram angefärbt und unter dem Mikroskop betrachtet. Darüber hinaus wurden biochemische Tests mit Citrat, Urease, Oxidase, Katalase, Zuckerfermentation und MR-VP an den bakteriellen Isolaten durchgeführt (Downs und Ito, 2001). Mikrobielle Belastung des kommerziell erhältlichen Gartenbaus Die Bestimmung der mikrobiellen Belastung der Proben erfolgte mit den unter frisch geernteten Proben beschriebenen Methoden. Das Ausbreitungsplattenverfahren wurde jedoch auf Plattenzählagar angewendet. Diese wurden 18 bis 24 Stunden bei 37 ° C inkubiert. Die einzelnen Kolonien wurden am Ende der Inkubationszeit gezählt.